Efecto in vitro de VersaKlin® sobre Meloidogyne incognita (Kofoid & White) Chitwood y detección de enzimas hidrolíticas
Contenido principal del artículo
Resumen
VersaKlin® es un producto comercial basado en la tecnología de Microorganismos EficientesTM que pudiera considerarse su uso como agente de control biológico de determinadas plagas agrícolas. El nemátodo Meloidogyne incognita constituye una plaga de gran importancia económica en organopónicos y casas de cultivos en Cuba, por lo que VersaKlin® pudiera ser una alternativa más para el biocontrol de este fitoparásito. Los objetivos de este trabajo fueron determinar la actividad antagónica in vitro sobre M. incognita y detectar convencionalmente las enzimas amilasa, lipasa, gelatinasa, quitinasa y caseinasa. Se probaron distintas concentraciones del producto sobre masas de huevos del fitonemátodo para evaluar la inhibición de la eclosión a las 24, 48, 72 y 120 h de exposición, su efecto sobre la movilidad de los juveniles del segundo estadio (J) emergidos y la irreversibilidad; además, se utilizaron cinco medios de cultivo para la determinación enzimática cualitativa en el producto puro y filtrado. Las concentraciones evaluadas (puro, 1:10 y 1:20) lograron la reducción de la eclosión de los huevos, desde las 24 h, con valores superiores al 70 % y con una afectación del 50 % en la movilidad de los J, ambos efectos con carácter irreversible. También se detectó la presencia de enzimas quitinasas y caseinasas en el filtrado del producto, resultados que demuestran las potencialidades para el control de nemátodos y su uso para estudios bajo condiciones controladas.
Detalles del artículo

Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial 4.0.
Aquellos autores/as que tengan publicaciones con esta revista, aceptan los términos siguientes de la Licencia CC Reconocimiento-NoComercial 4.0 Internacional (CC BY-NC 4.0):
Usted es libre de:
- Compartir — copiar y redistribuir el material en cualquier medio o formato
- Adaptar — remezclar, transformar y crear a partir del material
El licenciador no puede revocar estas libertades mientras cumpla con los términos de la licencia.
Bajo las condiciones siguientes:
- Reconocimiento — Debe reconocer adecuadamente la autoría, proporcionar un enlace a la licencia e indicar si se han realizado cambios. Puede hacerlo de cualquier manera razonable, pero no de una manera que sugiera que tiene el apoyo del licenciador o lo recibe por el uso que hace.
- NoComercial — No puede utilizar el material para una finalidad comercial.
- No hay restricciones adicionales — No puede aplicar términos legales o medidas tecnológicas que legalmente restrinjan realizar aquello que la licencia permite.
La revista no se responsabiliza con las opiniones y conceptos emitidos en los trabajos, son de exclusiva responsabilidad de los autores. El Editor, con la asistencia del Comité de Editorial, se reserva el derecho de sugerir o solicitar modificaciones aconsejables o necesarias. Son aceptados para publicar trabajos científico originales, resultados de investigaciones de interés que no hayan sido publicados ni enviados a otra revista para ese mismo fin.
La mención de marcas comerciales de equipos, instrumentos o materiales específicos obedece a propósitos de identificación, no existiendo ningún compromiso promocional con relación a los mismos, ni por los autores ni por el editor.
Cómo citar
Referencias
Abd-Elgawad M.M.M. 2014. Plant-parasitic nematode threats to global food security. Journal of Nematology 46(2):130.
Abd-Elgawad M.M.M. y Askary T.H. 2018. Fungal and bacterial nematicides in integrated nematode management strategies. Egyptian Journal of Biological Pest Control 28:74.
Agrios G.N. 2005. Enfermedades de plantas causadas por nematodos. En: Plant Pathology, 5ª Ed., Amsterdam, Paises Bajos: Elsevier Academic Press.
Almarales M., Martín C.V. y Leresma R. 2014. Prospección de nematodos en las zonas agrícolas de la provincia de Cienfuegos. Revista Agroecosistemas 2(2): 337- 348.
Alvarado-Capó Y., de Feria M., Veitia N., Acosta-Suárez M., Díaz A., Freire-Seijo M., Reyes F., Medina R., Oropesa K., Fontes L., Ramírez W. y Martín G. 2015. Efecto del bioproducto VersaKlin® sobre el Tizón temprano en la producción de semilla de papa cv. ‘Romano’. Biotecnología Vegetal 15(4):233-242.
Bhattacharjee R. y Dey U. 2014. An overview of fungal and bacterial biopesticides to control plant pathogens-diseases. African Journal of Microbiology Research 8: 1749-1762.
Bird A. 1971. The structure of nematodes. New York, EUA: Academic Press. pp. 318.
Bueno C. y Lesmes N. 2007. Utilización de Microorganismos Eficientes en levante de novillas brahmán bajo pastoreo semi- intensivo suplementado en la región de Palmira, Valle del Cauca. Universidad de la Salle, Bogota. Trabajo de grado presentado como requisito parcial para optar por el titulo como Zootecnista.
CABI/EPPO. 2002. Meloidogyne incognita. Distribution Maps of Plant Diseases. No. 854. 1a Ed. Wallingford, Reino Unido: CAB International. Disponible en: https://www.cabi.org/isc/abstract/20066500854. Consultado en Octubre de 2019.
Cuadra R., Zayas M.A., Meléndez O., Ramos N., Alvarez S. y Liñeiro L.D. 2013. Medidas agrotécnicas para el control de Meloidogyne incognita en cultivo protegido del pepino. Fitosanidad 17(3):161-5.
Díaz A. 2016. Manejo de enfermedades fúngicas en la producción de semilla de papa cv. ‘Romano’ con bioproductos. Universidad Central “Marta Abreu” de Las Villas, Villa Clara, Cuba. Tesis para optar por el grado académico de Máster en Agricultura Sostenible.
Díaz O. y Montero D. 2006. Determinacion de la acción de E.M. (Microorganismos Eficientes) bajo condiciones de invernadero, sobre la actividad de intercambio catiónico, en la recuperación de un suelo de Mondoñedo. Universidad de La Salle, Bogota, D.C. Trabajo de investigación para optar al título de Ingeniero Ambiental y Sanitario.
EEAITAJ. 2013. Microorganismos Eficaces (EM). Estación Experimental Agropecuaria para la Instalación de Tecnologías Apropiadas de Japón. Soriano, Uruguay, http://www.emuruguay.org/PDF/Microor-ganismos_Eficaces_EM_Presentacion_breve.pdf, Consultado en Abril de 2019.
Eloh K., Kpegba K., Sasanelli N., Koumaglo H.K y Caboni P. 2019. Nematicidal activity of some essential plant oils from tropical West Africa. International Journal of Pest Management DOI:10.1080/09670874.2019.1576950
Fernández E., Casanueva K., Gandarilla H., Márquez M.E., Despaigne F., Almandoz J. y García M. 2015. Nematodos asociados a las hortalizas bajo cultivo protegido en tres localidades de Cuba. Estudios de caso. NEMATROPICA 45(2):32.
Flores Y., López F. y Villanueva J. 2013. Efecto de los Microorganismos Eficaces (EM) y Trichoderma sp. sobre la incidencia de Fusarium y Sclerotium rolfsii en una siembra experimental de pimentón. Agrollania 10:38-43.
Fuentes P., Ferrer E. y Cristo M. 2011. Evaluacion de nematicidas biológicos en el control del nematodo agallero (Meloidogyne incognita Chitwood) en el cultivo protegido del Tomate (Lycopersicon esculentum Mill). Revista Infociencia 15(2).
Gómez L., Rodríguez M.G., Enrique R., Miranda I. y González E. 2009. Factores limitantes de los rendimientos y calidad de las cosechas en la producción protegida de hortalizas en Cuba. Rev. Protección Veg. 24(2):117-122.
González I., Infante D., Martínez B., Arias Y., González N., Miranda I. y Peteira B. 2012. Inducción de quitinasas y glucanasas en cepas de Trichoderma spp. promisorias como agentes para el control biológico. Biotecnología Aplicada 29:7-11.
Harrigan W.F. y McCance M. 1968. Técnicas de microbiología aplicada. En: Métodos de laboratorio en Microbiología. León, España: Editorial Academia.
Hernández-Ochandía D., Rodríguez M. G., Peteira B., Miranda I.; Arias Y. y Martínez B. 2015. Efecto de cepas de Trichoderma asperellum Samuels, Lieckfeldt y Nirenberg sobre el desarrollo del tomate y Meloidogyne incognita (Kofoid & White) Chitwood. Rev. Protección Veg. 30(2):139-147.
Herrera P.E., Cristóbal A.J., Tun J.M., Góngora J.A., Lomas B.T. 2011. Nematofauna nociva (Meloidogyne spp.) en cultivos hortícolas tropicales: Distribución y perspectivas de manejo en Yucatán. En: Recursos genéticos microbianos en la zona Golfo-Sureste de México, editado por Rojas, R.H., y A.M. Gamboa. SUBNARGEN. México: Morevalladolid S de R. L. de C. V.
Higa T. 1995. Effective Microorganisms: concept and recent advances in technology. Memorias de la 4ta Conferencia International de Kyusei Nature Farming, 19-21 Junio 1995. Paris, Francia. Editado por J. F. Parr y S. B. Hornick. EUA. pp. 247-248.
Isidro P. 2011.Manejo integrado de Meloidogyne en tomate. Serie Técnica Nº 39. Centro Regional Corrientes, Argentina, EEA INTA Bella Vista.
Ibrahim I.K.A. y Handoo Z.A. 2016. Occurrence of phytoparasitic nematodes on some crop plants in northern Egypt. Pakistan Journal of Nematology 34(2): 163-169.
Jepson S.B. 1987. Identification of root-knot nematodes (Meloidogyne species). Wallingford, Reino Unido: CAB International.
Kariuki G.M., Muriuki L., Thuo A.K., Kibunja J.W. 2014. Safe and effective nematode and other pests management strategies to strenghten the tomato value chain in coastal Kenya. Journal of nematology 46(2):185-186.
Leon, M., Samaniego L.M., Rodríguez R.C. y Liriano R. 2006. Utilización de Bacillus thuringiensis para el control de Meloidogyne incognita. Centro Agrícola 33(4):17-22.
Márquez M.E. y Fernández E. 2006. Selección de cepas de Bacillus thuringiensis con efecto nematicida. Manejo Integrado de Plagas y Agroecología 78: 63- 69.
Martínez B., González R. y Balance C. 1998. Antagonismo de aislamientos de Trichoderma spp. sobre algunos patógenos de caña de azúcar. Fitopatología. 33(4):207-211.
Martirena F.,Rodriguez-Rodriguez Y., Callico A., Gonzalez R., Diaz Y., Bracho G., Alujas A., Guerra de Leon J.O. y Alvarado-Capó Y. 2014. Microorganismbased bioplasticizer for cementitious materials. Construction and Building Materials 60:91–97.
Mena J., Pimentel E., Veloz L., Hernández A., León L. y Ramírez Y. 2003. Aislamiento y determinación de cepas bacterianas con actividad nematicida. Mecanismo de acción de T. paurometabola C-924 sobre nematodos. Biotecnol Apl. 20(4):248-52.
Moens M., Perry R.N. y Starr J.L. 2009. Meloidogyne Species - a diverse group of novel and important Plant Parasites. En: Root-knot Nematodes, editado por R. N. Perry, M. Moens y J. L. Starr. Wallingford, Reino Unido: CAB International.
Mokbel A.A., Obad I.M. e Ibrahim I.K. 2009. The role of antagonistic metabolites in controlling root-knot nematode, Meloidogyne arenaria on tomato. Alexandria Journal of Agricultural Research 54 (1):199- 205.
Morton C.O., Hirsch P.R. y Kerry B. 2004. Infection of plant- parasitic nematodes by nematophagous fungi - a review of application of molecular biology to understand infection processes and to improve biological control. Nematology 6:161-170.
Nyczepir A.P. y Thomas S.H. 2009. Current and Future Management Strategies in Intensive Crop Production Systems. En: Root-knot Nematodes, editado por R. N. Perry, M. Moens y J. L. Starr. Wallingford, Reino Unido: CAB International.
Oliva R., Fariñas M., Núñez D., García G., Perez Q., Naranjo M., Callico A., Bracho G. y Campa C. 2014. Estudio toxicologico de irritabilidad dermica y oftalmologica de Microorganismos Eficientes (VersaKlin®). RETEL 43:1-14.
Pakeerathan K., Mikunthan G., Tharshani N. 2009. Effect of different animal manures on Meloidogyne incognita (Kofoid & White) on tomato. World Journal and Agric. Sci. (5):432-435.
Pinzón Espinoza L.F., Candelero de la Cruz J., Tun Suárez J.M., Reyes Oregel V. y Alejo C.J. 2015. Control de Meloidogyne incognita en tomate (Solanum lycopersicum L.) con la aplicación de Trichoderma harzianum. Fitosanidad 19(1): 5-11.
Quesada-Mola Y., Fernández-Gonzálves E., Casanueva-Medina K., Ponce-Grijuela E. y Márquez-Gutiérrez M.E. 2019. Actividad biológica de nuevas cepas cubanas de Trichoderma spp. efectivas en el control de Meloidogyne incognita (Kofoid & White) Chitwood. Revista Cubana de Ciencias Biológicas 7(1):1-9.
Rivas O. y Gandarilla H. 2012. Fitonematode species associated to acerola (Malpighia punicifolia L.) in Cuban province of Granma. (Fitonematodos asociados a cereza (Malpighia punicifolia L.) en la provincia de Granma, Cuba.) Fitosanidad 16(3):175-177.
Rodríguez M.G., Hernández D., Enrique R., Gómez L., Díaz-Viruliche L. y Peteira B. 2011. Sintomatología y especies de Meloidogyne asociadas a vid (Vitis vinifera L. cv. Aramond) en Guira de Melena, Artemisa. (Resultados preliminares). Rev. Proteccion Veg. 26(2):111-117.
Rodríguez M.G., Gómez L., Fernández E. y Anzardo J.C. 2015. Manejo de Meloidogyne spp. en la producción protegida de hortalizas en condiciones tropicales: Caso de estudio Cuba. NEMATROPICA 45(2):38.
Romero T. y Vargas D. 2017. Uso de microorganismos eficientes para tratar aguas contaminadas. Ingeniería hidráulica y ambiental XXX-VIII (3):88-100.
Sahebani N. y Hadavi N. 2008. Biological control of the root-knot nematode Meloidogyne javanica by Trichoderma harzianum. Soil Biology & Biochemistry 40(2):2016-2020.
Seo S-M., Kim J., Koh S-H., Ahn Y-J., Park I-K. 2014. Nematicidal activity of natural ester compounds and their analogues against pine wood nematode, Bursaphelenchus xylophilus. J Agric Food Chem. 62(37): 9103–9108.
Sorribas F.J. y Ornat C. 2011. Estrategias de control integrado de nematodos fitoparásitos. En: Enfermedades causadas por nematodos fitoparásitos en España, editado por M.V. Phytoma-España S.L: Editoras Científicas.
Szabó M., Urbán P., Virányi F., Kredics L. y Fekete C. 2013. Comparative gene expression profiles of Trichoderma harzianum proteases during in vitro nematodes egg-parasitism. Biological Control 67: 337-343.
Tovar S.A. 2014. Géneros y especies de importancia en la agricultura en México. Revista Mexicana de Fitopatología 4:34-35.
