Control químico de nemátodos en plantas de banano (Musa AAA) cultivadas en macetas

Contenido principal del artículo

César Chávez Velazco
Eduardo Salas Alvarado
Mario Araya Vargas

Resumen

En dos experimentos en condiciones de invernadero con un diseño completamente al azar con seis repeticiones se evaluó el fenamiphos, ethoprophos y oxamyl en el control de nemátodos en banano (Musa AAA cv. Grande Naine) desarrollado en macetas con suelo sin esterilizar de una plantación comercial de banano infestada de nemátodos. A los 25 días de la siembra, las plantas in vitro fueron inoculadas con 509 ± 47 Radopholus similis (Cobb, 1893, Thorne, 1949). Los nematicidas se aplicaron en drench a una concentración de 100 mg L-1 (ppm) usando 100 mL de solución por maceta a los 48 días de inoculado el nemátodo. A los 38 días de aplicados los nematicidas se realizó la cosecha y se registró variables vegetativas y número de nemátodos. No se encontró interacción (p > 0,1534) en la población de ninguno de los nemátodos entre experimentos, de manera que se juntaron los datos y se analizaron en conjunto. Con excepción de Meloidogyne spp. p = 0,7257) donde sus poblaciones fueron muy bajas en todos los tratamientos, los tres nematicidas redujeron las poblaciones de Pratylenchus spp. entre 86 y 87 % (p = 0,0258), Helicotylenchus spp. entre 76 y 85 % (p < 0,0001), R. similis entre 43 y 61 % (p < 0,0001) y nemátodos totales entre 58 y 66 % (p < 0,0001). En congruencia con el control de nemátodos, ethoprophos y fenamiphos incrementaron (p = 0,0027) el peso de raíces en 44 y 54 %, respectivamente, el ethoprophos aumentó (p = 0,0003) el peso de follaje en 26 % y los tres nematicidas aumentaron el número de hojas por planta (p = 0,0026) entre 13 y 19 % y el diámetro del tallo (p = 0,0004) entre 13 y 20 %. Para el control de nemátodos los tres nematicidas evaluados fueron igualmente efectivos y podrían aplicarse indistintamente.

Detalles del artículo

Cómo citar
Chávez Velazco, C., Salas Alvarado, E., & Araya Vargas, M. (2018). Control químico de nemátodos en plantas de banano (Musa AAA) cultivadas en macetas. Fitosanidad, 22(1), 27-34. https://www.fitosanidad.edicionescervantes.com/index.php/fitosanidad/article/view/40
Sección
Artículos Originales

Cómo citar

Chávez Velazco, C., Salas Alvarado, E., & Araya Vargas, M. (2018). Control químico de nemátodos en plantas de banano (Musa AAA) cultivadas en macetas. Fitosanidad, 22(1), 27-34. https://www.fitosanidad.edicionescervantes.com/index.php/fitosanidad/article/view/40

Referencias

Abo-Elyousr, K.A.; Khan, Z, El-Morsi AM, Abedel-Moneim MF. 2010. Evaluation of plant extracts and Pseudomonas spp. for control of root-knot nematode, Meloidogyne incognita on tomato. Nematropica 40: 289-299.

Agrios, G.N. 2005. Plant Pathology. Fifth edition. Elsevier Academic Press. 948p.

Apt ,W.J., Caswell EP. 1988. Application of nematicides via drip irrigation. Annals of Applied Nematology 2: 1-10.

Araya, M, Moens T. 2005. Parasitic nematodes on Musa AAA (Cavendish subgroup, cvs Grande Naine, Valery and Williams), en Banana root system: towards a better understanding for its productive management, proceedings of an international symposium, p. 201-223. INIBAP, Montpellier, France.

Araya, M. 2004a. La biodegradación acelerada de nematicidas no fumigantes en plantaciones comerciales de banano (Musa AAA), en XVI Reunión ACORBAT, p. 113-125, Oaxaca, México.

Araya, M. 2004b. Inyección de Vydate y Nemacur en el pseudotallo de los hijos de sucesión de banano (Musa AAA) para el control de nemátodos. CORBANA 30(57): 59-75.

Araya, M, Lakhi A. 2004. Response to consecutive nematicide applications using the same product in Musa AAA, cv. Grande Naine originated from in vitro propagative material and cultivated on a virgin soil. Nematologia Brasileira 28(1): 55-61.

Araya, M. 2002. Metodología utilizada en el laboratorio de nematología de CORBANA S.A. para la extracción de nematodos de las raíces de banano (Musa AAA) y plátano (Musa AAB). CORBANA 28(55): 97-110.

Araya M. 1999. Efecto del Furadan 4F y Vydate 24 % L. aplicados en el pseudotallo de la planta de banano (Musa AAA) sobre el rendimiento y las poblaciones de nemátodos. CORBANA 24(51): 1-10.

Bartholomew, E.S., Bratwaite RAI, Isaac WAP. 2014. Control of root-burrowing nematode (Radopholus similis) in banana using extracts of Azadirachta indica and Allium sativum. Journal of Organic Systems 9(2): 49-55.

Bridge, J, Fogain R, Speijer P. 1997. The root lesion nematodes of banana. Pratylenchus coffeae (Zimmermann, 1898) Filip. y Schu. Stek., 1941. Pratylenchus goodeyi Sher y Allen, 1953. Musa Pest Fact Sheet No. 2. 4p.

Castillo, R.J.D., Araya VM, Patiño HLF. 2010. Respuesta a la aplicación de nematicida en banano en la zona de Urabá, Colombia. Agronomía Mesoamericana 21(2): 1-11.

Chin-Pampillo, JS, Carazo-Rojas E, Pérez-Rojas G, Castro Gutiérrez V, Rodríguez-Rodríguez CE. 2015. Accelerated biodegradation of selected nematicides in tropical crop soils from Costa Rica. Environ Sci Pollut Res 22: 1240-1249.

De Waele, D, Davide RG. 1998. The root-knot nematodes of banana. Meloidogyne incognita (Kofoid y White, 1919) Chitwood, 1949. Meloidogyne javanica (Treub, 1885) Chitwood, 1949. Musa pest factsheet No. 2, 4 p.

Farahat, A.A., Alsayed AA, El-Beltagi HS, Mahfoud NM. 2012. Impact of organic and inorganic fertilizers on nematode reproduction and biochemical alterations on tomato. Not Sci. Biol. 4(1): 48-55.

Gowen, S.R, Quénéhervé P, Fogain R. 2005. Nematode parasites of bananas and plantains, en Plant parasitic nematodes in subtropical and tropical agriculture, p. 611-643. CABI, Publishing. Greco, N, Brandonisio A, Dangelico A. 2000. Control of the potato cyst nematode, Globoderarostochiensis, with soil solarization and nematicides. Nematol. Medit. 28: 93-99.

Hugo, HJ, Mouton C, Malan AP. 2014. Accelerated microbial degradation of nematicides in vineyard and orchard soils. S. Afr. J. Enol. Vitic. 35(1):157-167.

Interián, IGG. 2010. Evaluación de la efectividad biológica de los productos químicos sintéticos y alternativos para el control del nematodo dorado de la papa (Globodera rostochiensis Woll) en Perote, Veracrus. Tesis Ing. Agronómo Universidad Autónoma de Chapingo, México, 65p.

Loveys, BR, Bird AF. 1973. The influence of nematodes on photosynthesis in tomato plants. Physiological Plant Pathology 3: 525-529.

Melakeberhan, H, Ferris H. 1989. Impact of Meloidogyne incognita on physiological efficiency of Vitis vinífera. Journal of Nematology 21(1): 74-80.

Moens, T, Araya M, Swennen R, De Waele D. 2004. Enhanced biodegradation of nematicides after repetitive applications and its effect on root and yield parameters in commercial banana plantations. Biology and Fertility of Soils 39(6): 407-414.

Olthof, Th HA. 1989. Effects of fumigant and nonfumigant nematicides on Pratylenchus penetrans and yield of potato. Supplement to Journal of Nematology 21(4S): 645-649.

Orion, D, Bar-Eyal M. 1995. Observations on the life cycle and behavior of Helicotylenchusmulticinctus in monoxenic culture of Arabidopsis thaliana. Nematropica 25(1): 67-70.

Orton, WKJ, Siddiqi MR. 1973. Radopholus similis. C.I.H. Description of plant-parasitic–nematodes. Commonwealth Institute of Helminthology, England, No 27, 4p.

Quénéhervé, P. 2008. Integrated management of banana nematodes. En: Integrated Management of Fruit Crops and Forest Nematodes, Springer, Pp: 3-61.

Resh, HM. 1995. Hyproponic food production. A definitive guidebook of soilless food growingmethods. Woodbridge Press Publishing Company, California, 527p.

Robalino, G, Román J, Cordero M. 1983. Efecto del nematicida-insecticida oxamil aplicado alsuelo y a las axilas de las hojas del bananero. Nematropica 13(2): 135-143.

Rohrbach, KR, Apt WJ. 1986. Nematode and disease problems of pineapple. Plant Disease. 70: 81-87.

Salguero, D, Rudon G, Blanco R, Moya C, Ramclam W, Medina L, Azofeifa D, Araya M. 2016. Effect of different nematicide applications per year on banana (Musa AAA) root nematode control and crop yield. Journal of Applied Biosciences 101: 9598-9609.

Schans, J. 1991. Reduction of leaf photosynthesis and transpiration rates of potato plants by second-stage juveniles of Globodera pallida. Plant Cell and Environment 14: 707-712.

Schneider, RC, Zhang J, Anders MM, Bartholomew DP, Caswell CEP. 1992. Nematicide efficacy, root growth, and fruit yield in drip-irrigated pineapple parasitized by Rotylenchulus reniformis. Journal of Nematology 24(4): 540-547.

Sipes, BS. 1997. Pre-plant and post-plant pesicides for nematode control in pineapple. Proc. 2nd Internat. Pineaaple Symposium. Acta Horticulturae 425: 457-464.

Sipes, BS, Schmitt DP. 1995. Evaluation of ethoprop and tetrathiocarbonate for reniform nematode control in pineapple. Supplement to the Journal of Nematology 27(4S): 639-644.

Taylor, AL, Loegering WQ. 1953. Nematodes associated with root lesions in Abaca. Turrialba 3: 8-13.

Vaast, Ph, Caswell-Chen EP, Zasoski RJ. 1998. Effects of two endoparasitic nematodes (Pratylenchus coffeae and Meloidogyne konaensis) on ammonium and nitrate uptake by arabica coffee (Coffea arabica L.). Applied Soil Ecology 10(1-2): 171-178.

Walker, GE. 2007. Effects of organic amendments, fertilisers and fenamiphos on parasitic and free-living nematodes, tomato growth and yield. Nematol. Medit. 35: 131-136.

Wilcox-Lee, D, Loria R. 1987. Effects of nematode parasitism on plant-water relations. Vistas on Nematology. Society of Nematologists, Inc. p. 260-266.